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WB檢測(cè)中二抗的選擇方法

2020.5.12

WB檢測(cè)之二抗

二抗選擇

二抗是用一抗免疫動(dòng)物制備的抗一抗的抗體,選擇范圍較窄,基本是商品化的,在不考慮二抗修飾類型的前提下,二抗的選擇需要遵循以下原則:二抗來源種屬、一抗來源種屬和抗原來源種屬互不相同。例如如果研究對(duì)象是人的蛋白X,選擇了鼠抗X一抗,則可選擇兔抗鼠二抗或者羊抗鼠二抗。

二抗選擇要考慮的問題有:

①對(duì)單抗類一抗,二抗需與一抗的類別或亞類相匹配(多抗類一抗主要是IgG類免疫球蛋白故相應(yīng)二抗就是抗IgG抗體,不作考慮)。

一抗類別或亞類

二抗????????????????

IgM??????????

抗IgM??????????????

IgG1、IgG2a、IgG2b、IgG3???

抗IgG、抗IgG1、抗IgG2a、抗IgG2b、抗IgG3??????

未知?????????

抗IgG???????????????

②某些組織或細(xì)胞含有較多的Fc受體,如脾臟、淋巴細(xì)胞等,此時(shí)二抗需要選擇抗IgG F(ab’)2二抗,避免各種Ig保守結(jié)構(gòu)域?qū)е碌慕徊娣磻?yīng)。然而各種Ig仍具有保守的輕鏈結(jié)構(gòu)域,因此還是有一定程度的交叉反應(yīng)。

WB檢測(cè)之內(nèi)參抗體

Western Blot檢測(cè)方法不僅能檢測(cè)靶蛋白存在與否,還能比較不同條件下或者不同組織中靶蛋白的相對(duì)表達(dá)量,可作為蛋白表達(dá)水平最直接的證據(jù)。在WB實(shí)驗(yàn)中有眾多不確定因素影響靶蛋白表達(dá)水平的測(cè)定,如方法學(xué)本身性質(zhì)、操作誤差等。為準(zhǔn)確衡量靶蛋白表達(dá)水平,需要精確一致的上樣量,使用內(nèi)參的意義即是保證上樣量的一致。內(nèi)參即內(nèi)部參照(Internal Control),對(duì)哺乳動(dòng)物細(xì)胞一般指管家基因的表達(dá)蛋白(Housekeeping Proteins)。此類蛋白在各組織和細(xì)胞中的表達(dá)相對(duì)恒定,可作為檢測(cè)蛋白表達(dá)水平變化的參照物。當(dāng)內(nèi)參條帶亮度基本一致時(shí),基本可以確定上樣量是一致的,通常采用比較靶蛋白和內(nèi)參蛋白條帶亮度比值來進(jìn)行相對(duì)定量。

WB實(shí)驗(yàn)中涉及到的蛋白-抗體結(jié)合是一個(gè)復(fù)雜的活性生物大分子間的相互作用,眾多因素都會(huì)影響實(shí)驗(yàn)的結(jié)果。例如時(shí)間、溫度、濃度、離子強(qiáng)度等,在實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)時(shí)就需要有嚴(yán)謹(jǐn)?shù)膶?duì)照方案,通過對(duì)照就容易判斷問題所在,嚴(yán)謹(jǐn)?shù)腤B實(shí)驗(yàn)中需要設(shè)立蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn)、空白載體對(duì)照、未誘導(dǎo)對(duì)照、已知量標(biāo)準(zhǔn)物正對(duì)照和內(nèi)參。

內(nèi)參使用方法

1.標(biāo)記內(nèi)參:酶標(biāo)的內(nèi)參抗體可避免二抗結(jié)合總蛋白中某些免疫球蛋白產(chǎn)生的雜帶,使用時(shí)只需在二抗孵育時(shí)加入酶標(biāo)內(nèi)參抗體,按照正常操作即可。

2.普通內(nèi)參:當(dāng)靶蛋白分子量與所選內(nèi)參分子量相差不大時(shí),可先對(duì)靶蛋白進(jìn)行顯色檢測(cè),然后用Strip緩沖液洗掉膜上抗體,重新對(duì)內(nèi)參蛋白進(jìn)行顯色檢測(cè)。當(dāng)靶蛋白分子量與所選內(nèi)參分子量相差較明顯時(shí),可對(duì)轉(zhuǎn)膜預(yù)染,根據(jù)蛋白質(zhì)分子量將膜剪為兩部分并分開進(jìn)行靶蛋白和內(nèi)參蛋白的顯色檢測(cè)。

內(nèi)參抗體選擇

常用的蛋白內(nèi)參有GAPDH和β-actin或β-tubulin,內(nèi)參的選擇原則是選擇與靶蛋白分子量相差5KD以上的內(nèi)參,對(duì)不同的樣本則需要根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行選擇。

1.根據(jù)物種選擇

哺乳動(dòng)物來源的組織或細(xì)胞樣本通常選擇β-actin、β-tubulin、GAPDH、Lamin B、Histone H3、Na+/K+-ATPase等。植物來源的樣本常選擇plant actin、Rubisco等。對(duì)于其他研究稀少的物種可參考報(bào)導(dǎo)的文獻(xiàn)進(jìn)行選擇。以GAPDH為例,抗GAPDH單抗(ABGENT,clone 6C5)能夠與非洲蟾蜍、猴、豬、羊、狗、貓、魚、蛙、雞、兔、小鼠、大鼠及人組織來源的GAPDH反應(yīng),但不能與酵母GAPDH反應(yīng)。

2.根據(jù)組織類型選擇

以肌動(dòng)蛋白actin為例,肌動(dòng)蛋白actin在不同物種之間高度保守,且同一物種不同類型actin的序列相似性大于90%,使其很難獲得特異性較好的抗actin抗血清。但同一物種不同類型actin的N段序列相似性僅50~60%,故N端序列常被用來制備抗actin的抗體。脊椎動(dòng)物肌動(dòng)蛋白分為α、β和γ三種類型,α型分布于心肌、橫紋肌細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞中,γ型分布于平滑肌細(xì)胞和非肌細(xì)胞中,β型分布于非肌細(xì)胞中,共六種actin蛋白。不同廠商生產(chǎn)抗β-actin抗體過程中選擇的免疫區(qū)段在不同型actin之間的保守與否影響到抗體的組織特異性。選用β-actin N端的16個(gè)氨基酸序列制備的單多抗占大多數(shù),這類抗體均不能檢測(cè)心肌和橫紋肌中的actin條帶。選用β-actin C端16個(gè)氨基酸序列制備的抗體則可以在肌肉細(xì)胞中檢測(cè)到actin的信號(hào)。

3.根據(jù)蛋白組分選擇

提取細(xì)胞蛋白組分過程中,胞漿蛋白通常是最先提取出來的。離心全細(xì)胞裂解液所得的上清含胞漿蛋白,而沉淀含胞核蛋白和胞膜蛋白,繼續(xù)加大裂解程度即可提取到胞核蛋白,最后才能提取到胞膜蛋白。通過特殊的方法還可以從胞漿蛋白中提取到線粒體蛋白、葉綠體蛋白等。針對(duì)不同的細(xì)胞組分需要選擇不同的內(nèi)參抗體。

類目??

內(nèi)參???????

觀測(cè)分子量??

細(xì)胞總蛋白

GAPDH??????

36 kDa????

β-actin??????

42kDa?????


β-tubulin???????

55kDa?????


胞膜蛋白

Na+/K+-ATPase???

100kDa????

Integrin???????

90-160kDa???


胞漿蛋白

caveolin-1?????

20-24kDa???

Actin???????

42kDa????


Tubulin??????

50kDa????


線粒體蛋白

VDAC1??????

35-37kDa???

COX IV??????

17kDa?????


胞核蛋白

Lamin A??????

65 kDa,70kDa?

Lamin B??????

66-70kDa???


Histone H3?????

18kDa????


PCNA???????

36kDa????


laminA/C??????

74kDa????


Caveolin??????

20-24kDa???


TATA binding protein?

鼠源:33-36kDa

人源:37-43kDa


Pax-5???????

45kDa????


Rb????????

110kDa????


c-Jun???????

43 kDa,48kDa?


c-Fos???????

62kDa????


nucleoporin p62??

61kDa????


在選擇細(xì)胞總蛋白內(nèi)參時(shí),GAPDH、β-actin、tubulin三種內(nèi)參同時(shí)發(fā)生變化的情況很少。如出現(xiàn)這種情況,可用胞核內(nèi)參甚至線粒體內(nèi)參代替。另外,不同的實(shí)驗(yàn)?zāi)康膽?yīng)選擇不同的內(nèi)參,例如檢驗(yàn)質(zhì)核分離效果應(yīng)選擇胞漿蛋白內(nèi)參actin,抽提的核組分中檢測(cè)不到actin則表示質(zhì)核分離效果較好。

總之,內(nèi)參的選擇要根據(jù)實(shí)際情況而定,不僅要考慮到物種、組織、組分等因素,還需要考慮到實(shí)際的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)。如實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)中包括組織缺氧、糖尿病等因素變量,則不適宜選擇GAPDH作內(nèi)參,研究細(xì)胞增殖的相關(guān)實(shí)驗(yàn)中則不適宜選擇c-Jun作內(nèi)參,在凋亡實(shí)驗(yàn)中則要避免使用TBP、Lamin等。


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